猪的白细胞介素10ELISA试剂盒Porcine IL- 10 ELISA KIT - ELISA试剂盒 - 细胞冻存液|胎牛血清|细胞株|细胞培养基|ELISA试剂盒|ECL发光液|国产血清|澳洲血清|完全培养基-上海尊龙凯时人生就是搏生物科技有限公司
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猪的白细胞介素10ELISA试剂盒Porcine IL- 10 ELISA KIT
货号  :HP-03
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白细胞介素10定量分析酶联免疫检测试剂盒

 

本试剂盒仅供科研使用 。用于体外定量检测猪血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-10浓度  。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整, 如有产品包装破损或质量投拆 ,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏   。

 

IL-10简介    :

IL-10是个多效性的因子  ,能够对多种细胞起作用 ,主要表现为免疫抑制和免疫刺激两方面的作用     ,特别是在调节淋巴系和髓系的细胞功能方面扮演重要的作用  。IL-10 也具有单核细胞/巨噬细胞依赖  、抗原刺激引起的的PBMNC  NK 细胞合成其它细胞因子的抑制作用。巨噬细胞膜介导的共刺激引起的T细胞和NK细胞活化后的产物及功能也可被IL-10所抑制。IL-10是单核细胞/巨噬细胞功能的强有力的调节物。IL-10作为细胞介导的免疫反应的抑制物,能够抑制像前列腺素E2 、TNF-α 、IL-1、IL-10 IL-8等许多引起炎症的细胞因子  。IL-10 能够促进可溶性TNF受体的释放和ICAM-1和B7在细胞表面的表达。IL-10还参与B细胞  、柱状细胞及胸腺细胞的增殖和分化的调控  。在许多与寄生虫感染的报道中,IL-10表达也会增加  ,如曼森氏血吸虫感染 、利什曼原虫感染 、弓形虫感染 、锥虫感染等。分枝杆菌的感染如麻风分枝杆菌       、结核杆菌、 鸟分枝杆菌等的感染也会引起IL-10的表达升高  。

IL-10DNA序列和氨基酸序列上高度同源  ,其DNA序列中一个开放的基因框与艾伯斯坦-巴尔病毒基因组上基因框BCRF1高度同源 ,这可能在病毒感染中扮演重要角色的原因 。在许多与寄生虫感染的报道中,IL-10表达也会增加 ,如曼森氏血吸虫感染、利什曼原虫感染、弓形虫感染 、锥虫感染等。分枝杆菌的感染如麻风分枝杆菌 、结核杆菌 、 鸟分枝杆菌等的感染也会引起IL-10的表达升高   。

 

检测原理:

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中IL-10 的浓度。IL-10 捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时  ,其中的IL-10 会与捕获抗体结合  ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。当加入生物素化的抗猪IL-10 抗体后   ,抗猪IL-10 抗体与IL-10 接合 ,形成夹心的免疫复合物   ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。最后加入显色剂,若样本中存在IL-10 将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质     ,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测  ,读其450nm处的OD值,IL-10 浓度与OD450值之间呈正比 ,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值   ,即可算出标本中IL-10 浓度。

 

IL-10定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

组分

规格(96T/48T)

猪IL-10预包被板

12条/6

样本分析缓冲液

5ml/3ml

标准品稀释液

10ml/5ml

猪IL-10标准品

2支/1支(冻干)

猪IL-10生物素化抗体

10ml/5ml

亲和素连接的HRP酶

10ml/5ml

浓缩洗涤液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板胶纸

3/2

说明书

1

标本收集:

1.标本的收集请按下列流程进行操作   ;

A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

B.血清标本应是自然凝固后  ,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;

C.血浆标本    ,推荐用EDTA的方法收集 ;

D.若待测样本不能及时检测  ,标本收集后请分装  ,冻存于-20℃ ,避免反复冻融  。

2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

3.标本应清澈透明 ,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除 。

4.请勿使用溶血 ,高血脂或污染的标本检测 ,否则结果将不准确。

注:猪血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测 。

 

注意事项:

1.试剂盒请保存在28℃ 。

2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

3.标准品复溶加样后 ,剩余部份请丢弃。

4.底物请勿接触氧化剂和金属。

5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染  。

6.严禁混用不同批号的试剂盒组份 。

7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要    ,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀 。

8.室温反应 ,请严格控制在25~28℃。

9.洗涤过程是至关重要的 ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔 。

11.加样过程中避免气泡的产生。

12.血清和血浆标本的检测时 ,检测抗体的孵育时间应适当延长  。

 

检测前准备工作: 

1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟 ;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存  。

2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水) 。

3.如有5X准品稀释液 ,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。

4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-10终浓度达到1500pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃    ,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中    。(标准曲线取七个点 ,最高浓度为1500 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

图片2.png 

洗涤方法:

自动洗板机或猪工洗板 :每孔洗涤液为300ul  ,注入与吸出间隔15-30秒 。洗板5次 。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

 

实验过程需自备的材料 :

1.不同规格的加样枪及相应的枪头   ;   

2.酶标仪   ;

3.自动洗板机 ;                     

4.去离子水或双蒸水;

 

操作步骤:

1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数 ,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封 ,保存于4℃ 。

2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔  ,室温(25-28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本   ,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本 ,如稀释量大 ,请将样本与样本分析缓冲液等量加入 ,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。    

4.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)     。用封板胶纸封住反应孔  ,室温(25-28℃)孵育60分钟。   

6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔  ,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

8.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

9.加入显色剂TMB100ul/孔 ,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值 。

 

结果判断:

1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值  。

3.手工绘制标准曲线   。以标准品浓度作横坐标  ,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点 。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测 ,计算浓度时应乘以稀释倍数 。

典型数值和参考曲线

浓度pg/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.114

0.094

0.134

46.875

0.263

0.256

0.27

93.75

0.391

0.385

0.397

187.5

0.557

0.527

0.587

375

0.975

0.954

0.996

750

1.478

1.446

1.51

1500

2.374

2.243

2.505

IL-10参考标准曲线

图片1.png 

注意:本图仅供参考 ,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

 

灵敏度       ,特异性和重复性:

1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为34.5pg/ml。

2.特异性:与人 、小鼠   、大鼠的IL-10及猪的IFN-γ均无交叉反应性。

3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

 

参考文献:

1. Sennikov, S.V. et al. (2002) Cytokine 17:221.

2. Kotenko, S.V. et al. (1997) EMBO J. 16:5894.

3.. Gruenberg, B.H. et al. (2001) Genes Immun. 2:329.

4. Rich, B.E. and T.S. Kupper (2001) Curr. Biol. 11:R531.

5. Fickenscher, H. et. al. (2002) Trends Immunol. 23:89.

6. Rea, D. et al. (2000) Blood 95:3162.

7. Olikowsky, T. et al. (1997) Immunology 91:104.

8. Iwasaki, A. and B.L. Kelsall (1999) J. Exp. Med. 190:229.

9. Moore, K.W. et al. (2001) Annu. Rev. Immunol. 19:683


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