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猪的白细胞介素1βELISA试剂盒Porcine IL- 1βELISA KIT
货号   :HP-01
价格  :¥3400.00/2120.00.00
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猪白细胞介素 1β定量分析酶联免疫检测试剂盒

 

本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测猪血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-1β浓度 。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整, 如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏 。

 

IL-1β简介   :

白介素-1又称淋巴细胞激活因子,由 IL-1α和 IL-1β两种形式的多肽类细胞因子构成       ,与许多的细胞活性相关,包括增殖、分化以及凋亡, 主要由血液中的单核细胞和巨噬细胞所产生, 各种上皮细胞,内皮细胞和间质细胞也能产生IL-1β, 但血液中的IL-1β 主要是由单核细胞和巨噬细胞所产生的IL-1β      。

由激活巨噬细胞产生的IL-1β ,经蛋白酶-1酶解活化后  ,成熟的白介素-1分子可以诱导白介素-2的释放 、促进B细胞成熟与增殖 、诱导成纤维细胞生长因子活性  ,通过这些影响可以刺激胸腺细胞增殖 ,进而影响机体的免疫反应。研究表明白介素-1蛋白与炎症初始反应相关   ,起到调节因子的作用  ,通常被认为是内源性致热原;细菌的内毒素或者一些非细菌的炎症因子都会诱导IL‐1产生,然后被释放到局部组织  ,IL-1β含量升高表明机体内有组织损伤或者感染产生, 如败血症等  。对IL-1β的研究主要集中在各种生理和病理免疫反应和炎症反应过程领域  。

 

检测原理:

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中IL-1β的浓度  。IL-1β捕获抗体已预包被于酶标板上  ,当加入标本或参考品时     ,其中的IL-1β会与捕获抗体结合  ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗猪IL-1β抗体后 ,抗猪IL-1β抗体与IL-1β接合,形成夹心的免疫复合物 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素 。生物素与亲合素特异性结合   ,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来 ;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在IL-1β将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质  ,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值 ,IL-1β浓度与OD450值之间呈正比 ,通过参考品绘制标准曲线 ,对照未知样本中OD值   ,即可算出标本中IL-1β浓度。

IL-1β定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

组分

规格(96T48T)

猪IL-1β预包被板

12条/6

样本分析缓冲液

5ml/3ml

标准品稀释液

10ml/5ml

猪IL-1β标准品

2支/1支(冻干)

猪IL-1β生物素化抗体

10ml/5ml

亲和素连接的HRP酶

10ml/5ml

浓缩洗涤液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板胶纸

3/2

说明书

1

标本收集:

1.标本的收集请按下列流程进行操作;

A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可     ;

B.血清标本应是自然凝固后  ,取上清   ,避免在冰箱中凝固血液 ;

C.血浆标本 ,推荐用EDTA的方法收集 ;

D.若待测样本不能及时检测 ,标本收集后请分装  ,冻存于-20℃,避免反复冻融  。

2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除   。

4.请勿使用溶血     ,高血脂或污染的标本检测 ,否则结果将不准确   。

注   :猪血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测   。

 

注意事项:

1.试剂盒请保存在28℃ 。

2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶   ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液 。

3.标准品复溶加样后    ,剩余部份请丢弃 。

4.底物请勿接触氧化剂和金属 。

5.加样时,请及时更换枪头  ,避免交叉污染 。

6.严禁混用不同批号的试剂盒组份   。

7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

8.室温反应 ,请严格控制在25-28℃   。

9.洗涤过程是至关重要的 ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

11.加样过程中避免气泡的产生。

12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长

 

检测前准备工作:

 1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟     ;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存        。

2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)  。

3.如有5X准品稀释液 ,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水) 。

4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-1β终浓度达到4000pg/ml  ,室温反应   ,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中  。(标准曲线取七个点  ,最高浓度为4000pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

图片2.png 

洗涤方法:

自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul    ,注入与吸出间隔15-30秒    。洗板5次  。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干   。

 

实验过程需自备的材料:

1.不同规格的加样枪及相应的枪头 ;   

2.酶标仪  ;

3.自动洗板机   ;                     

4.去离子水或双蒸水  ;

 

操作步骤:

1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数  ,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封 ,保存于4℃。

2.建议设置本底较正孔 ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液  。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中  ,用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本,如稀释量大  ,请将样本与样本分析缓冲液等量加入 ,不足部分用标准品稀释液补充至100ul 。    

4.洗板5次  ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

5.加入生物素化抗体工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25-28℃)孵育60分钟   。    

6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔      ,避光室温(25-28℃)孵育20分钟 。

8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

9.加入显色剂TMB100ul/孔  ,避光室温(25-28℃)孵育20分钟    。

10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值  。

 

结果判断:

1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效 ,复孔的值平均后可作为测量值  。

2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

3.手工绘制标准曲线       。以标准品浓度作横坐标 ,OD值作纵坐标 ,以平滑线连接各标准品的坐标点 。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度   。

4.若标本OD值高于标准曲线上限  ,应适当稀释后重测    ,计算浓度时应乘以稀释倍数  。

典型数值和参考曲线

浓度pg/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.114

0.106

0.122

125

0.274

0.308

0.24

250

0.371

0.413

0.329

500

0.556

0.624

0.488

1000

0.872

0.944

0.8

2000

1.443

1.505

1.381

4000

2.306

2.424

2.188

IL-1β参考标准曲线

图片1.png 

注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量 。

 

灵敏度   ,特异性和重复性:

1.灵敏度 :多次重复结果表明,最小检出量为69pg/ml    。

2.特异性 :与猪的IL-1α、IL-1ra 人的IL-1β无交叉反应性 。与大鼠 、小鼠的IL-1β分别有1.4%、0.39%的交叉反应性。

3.重复性 :板内,板间变异系数均<10%.

 

参考文献:

1. Greenfeder, S.J. et al. (1995) J. Biol. Chem. 270:13757.

2. Martinon, F. and J. Tschopp (2007) Cell Death Differ. 14:10.

3. Allan, S.M. et al. (2005) Nat. Rev. Immunol. 5:629.

4. Huether, M.J. et al. (1993) Gene 129:285.

5. Slack, J. et al. (1993) J. Biol. Chem. 268:2513.

6. Kornman, K.S. (2006) Am. J. Clin. Nutr. 83:475S.

7. Sims, J.E and D.E. Smith (2010) Nat. Rev. Immunol. 10:89.

8. Dinarello, C. et al. (2010) Nat. Immunol. 11:973.

9. Isoda, K. and F. Ohsuzu (2006) J. Atheroscler. Thromb. 13:21.


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