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      大鼠T细胞免疫球蛋白1ELISA试剂盒Rat KIM-1 ELISA KIT
      货号:HR-031
      价格:¥3800.00
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      大鼠T细胞免疫球蛋白定量分析酶联免疫检测试剂盒

       

      本试剂盒仅供科研使用 。用于体外定量检测大鼠血清 、血浆或细胞培养上清液中的KIM-1浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整,如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏。

       

      大鼠KIM-1简介 :

      、T细胞 、、和造细胞进行。

       

      检测原理:

      本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中KIM-1的浓度 。KIM-1捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时 ,其中的KIM-1会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗大鼠KIM-1抗体后,抗大鼠KIM-1抗体与KIM-1接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在KIM-1将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色 。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,KIM-1浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中KIM-1浓度。

       

      大鼠KIM-1定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

      组分

      规格(96T/48T)

      大鼠KIM-1预包被板

      12条/6条

      样本分析缓冲液

      5ml/3ml

      标准品稀释液

      10ml/5ml

      大鼠KIM-1标准品

      2支/1支(冻干)

      大鼠KIM-1生物素化抗体

      10ml/5ml

      亲和素连接的HRP酶

      10ml/5ml

      浓缩洗涤液 20×

      30ml/15ml

      TMB底物

      10ml/5ml

      中止液

      5ml/3ml

      封板胶纸

      3/2张

      说明书

      1份

      标本收集:

      1.标本的收集请按下列流程进行操作 ;

      A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可 ;

      B.血清标本应是自然凝固后 ,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液;

      C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;

      D.若待测样本不能及时检测 ,标本收集后请分装 ,冻存于-20℃,避免反复冻融 。

      2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

      3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

      4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

      注 :大鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。

      注意事项:

      1.试剂盒请保存在2~8℃。

      2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

      3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

      4.底物请勿接触氧化剂和金属。

      5.加样时 ,请及时更换枪头,避免交叉污染。

      6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

      7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

      8.室温反应 ,请严格控制在25-28℃。

      9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

      10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

      11.加样过程中避免气泡的产生。

      12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长

       

      检测前准备工作:

      1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

      2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

      3. 如有5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

      4.标准品:按标签复溶体积用标准品稀释液复溶使KIM-1终浓度达到600pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中 。(标准曲线取七个点 ,最高浓度为600 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

      图片2.png 

      洗涤方法:

      自动洗板机或大鼠工洗板 :每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。最后洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

       

      实验过程需自备的材料:

      1.不同规格的加样枪及相应的枪头 ;   

      2.酶标仪 ;

      3.自动洗板机;                     

      4.去离子水或双蒸水;

       

      操作步骤:

      1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

      2.建议设置本底较正孔 ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液 。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

      3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中 ,用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本,如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入,不足部分用标准品稀释液补充至100ul 。      

      4.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

      5.加入生物素化抗体工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟。   

      6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

      7.加入亲和素链接的HRP酶工作液(100ul/孔) 。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。   

      8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

      9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

      10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

       

      结果判断:

      1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效 ,复孔的值平均后可作为测量值。

      2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

      3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

      4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

      典型数值和参考曲线

      Pg/ml

      平均值

      典型数值1

      典型数值2

      0

      0.113

      0.124

      0.102

      31.25

      0.287

      0.305

      0.269

      62.5

      0.421

      0.452

      0.39

      125

      0.668

      0.683

      0.653

      250

      1.048

      1.073

      1.023

      500

      1.512

      1.542

      1.482

      1000

      2.363

      2.453

      2.273

      大鼠KIM-1参考标准曲线.

      图片1.png 

       

      注意 :本图仅供参考 ,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

       

      灵敏度,特异性和重复性:

      1.灵敏度 :多次重复结果表明,最小检出量为13.6pg/ml 。

      2.特异性:与人TIM-1、TIM-4和小鼠TIM-1、TIM-4等均没有交叉反应 。

      3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

       

      参考文献:

      1. Mesri, M. et al. (2006) Int. Immunol. 18:473.

      2. Baily, V. et al. (2002) J. Biol. Chem. 277:39739.

      3. Mariat, C. et al. (2005) Phil. Trans. R. Soc. B 360:1681.

      4. de Souza, A.J. et al. (2005) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102:17113.

      5. Meyers, J.H. et al. (2005) Trends Mol. Med. 11:362.


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