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使用血清的小技巧
1.血清必须贮存于–20~ -70℃ ,若存放于4℃,请勿超过一个月   。如果一次无法用完一瓶,可将40~45ml分装于无菌50ml离心管中,由于血清结冻时体积会增加约10% , 必须预留此膨胀体积之空间,否则易发生污染或容器冻裂之情形。

2.一般厂商提供之血清为无菌  ,不需再无菌过滤。若发现血清有许多悬浮物 ,则可将血清加入培养基内一起过滤 ,勿直接过滤血清 。!`%V5
3.瓶装(500ml)血清解冻步骤(逐步解冻法):-20℃或–70℃至4℃冰箱溶解一天,至室温下全溶后再分装  ,一般以50ml无菌离心管可分装40~45ml。在溶解过程中须规则摇晃均匀(小心勿造成气泡) ,使温度与成分均一 ,减少沈淀的发生  。勿直接由20℃直接至37℃解冻,因温度改变太大,容易造成蛋白质凝结而发生沈淀 。
4.热灭活是指56℃,30分钟加热已完全解冻之血清。加热过程中须规则摇晃均匀。此热处理之目的是使血清中之补体成份(complement)去活化     。除非必须  ,一般不建议作此热处理 ,因为会造成沈淀物之显著增多    ,且会影响血清之品质    。补体受到破坏。
5.勿将血清置于37℃太久,若在37℃放置太久 ,血清会变得混浊,同时血清中许多较不稳定之成份亦会因此受到破坏 ,而影响血清之品质。
6.血清之沈淀物
6.1.凝絮物:发生之原因有许多种 ,但普遍之原因是血清中之脂蛋白(lipoprotein)变性及解冻后血清中存在之血纤维蛋白(fibrin)造成   ,这些凝絮沈淀物不会影响血清本身之品质 。若欲减少这些凝絮沈淀物,可用离心3000rpm,5min去除 ,或离心后上清液可以加入培养基中一起过滤 。不建议用过滤步骤去除这些凝絮沈淀物,因为会阻塞过滤膜。生物
6.2.显微镜下观察之“小黑点  :通常经过热处理之血清  ,沈淀物的形成会显著的增多  。有些沈淀物在显微镜下观察像是小黑点,常会误认为血清遭受污染,而将血清放在37℃中欲培养此微生物,但在37℃环境下  ,又会使此沈淀物增多 ,更会误认为微生物之增殖  ,但以培养细菌之培养基检测  ,又没有污染 。一般而言,此小黑点应不会影响细胞之生长,但若怀疑此血清之品质 ,应立即停用 ,更换另一批号的血清。


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